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F&S Reports · 2026 · Caso clínico

Recombinación meiótica en 4 de 13 embriones

«Meiotic Recombination Observed through Preimplantation Genetic Testing for Two X-linked Conditions: First Reported Case in Humans»

Anna Iversen y Sara K. Gerber (co-primeras firmas), Solmaz Chamanara, Kajal Verma, Sophia Adelson, Cindy Yang y Christina G. Tise.
Genética Médica y Genética Perinatal · Endocrinología Reproductiva e Infertilidad · Patología. Stanford University School of Medicine, Stanford, California.

Diseño Caso clínico Muestra 13 embriones DOI 10.1016/j.xfre.2026.08.001 Versión Journal Pre-proof

Antes de entrar

Qué es el crossing over y qué hizo en este caso

Esta sección explica, con las definiciones que da el propio artículo, lo que hace falta saber para leer el resto. Quien ya trabaje con PGT-M puede saltarla.

La recombinación meiótica, o crossing over, es el proceso por el que los cromosomas homólogos intercambian material genético y crean combinaciones nuevas de alelos en la descendencia. Es parte del funcionamiento normal de la meiosis. Ocurre en la mayoría de los cromosomas, incluido el X, y es más frecuente en la meiosis femenina que en la masculina.

Esta madre tenía dos variantes patogénicas distintas en el mismo cromosoma X, la misma copia: una en OTC y una deleción que se lleva por delante STS. Eso es lo que quiere decir que estén en cis. Su hijo las heredó las dos a la vez, y murió a los tres días.

El PGT-M biopsia el trofoectodermo de cada embrión para buscar la variante familiar y transferir después los embriones aparentemente no afectados. Cuando la variante no se puede leer directamente, se lee por ligamiento: se miran marcadores de ADN situados muy cerca de ella y se da por hecho que marcador y variante se heredan juntos. Aquí la deleción de STS solo se podía leer así.

Ahí está el problema que enseña este caso. Si entre la variante y su marcador ocurre un crossing over, el embrión puede heredar la variante patogénica sin heredar el patrón de marcadores esperado. En palabras del artículo, eso da un falso negativo: un embrión afectado clasificado como no afectado.

«En este contexto, la recombinación no es una complicación rara, sino un evento biológico probable.»

Iversen, Gerber et al., discusión del artículo

La pregunta

Dos variantes en el mismo cromosoma, ¿se heredan siempre juntas?

Cuando una paciente porta dos variantes patogénicas en el mismo cromosoma, el PGT-M se apoya en un supuesto: que las dos viajarán juntas al embrión.

Ese supuesto es la base del análisis por ligamiento, considerado el patrón de referencia del PGT-M porque sortea el allele dropout, la amplificación preferente y el fallo de amplificación de uno de los dos alelos. El análisis por ligamiento evalúa marcadores de ADN situados muy cerca de la variante causante y presume que ambos se coheredarán.

El supuesto se debilita con la distancia. La probabilidad de que dos loci del mismo haplotipo parental se separen por recombinación meiótica crece conforme aumenta la distancia genómica entre ellos. Un centimorgan corresponde a una probabilidad aproximada del 1 % de recombinación y equivale, de forma aproximada, a un millón de pares de bases.

Una mujer de 35 años acudió a consejo genético preconcepcional tras descubrir que era heterocigota para una variante en OTC, gen ligado al X asociado al déficit de ornitina transcarbamilasa. Su hijo había fallecido a los tres días de vida por una crisis hiperamoniémica: tenía déficit de OTC y déficit de sulfatasa esteroidea. Ninguna de las dos variantes salió en el cribado de portadores.

Las dos quedaron confirmadas en cis en el haplotipo materno. Y las separan unos 31 millones de pares de bases. ¿Se heredan juntas a esa distancia?

Los resultados

Cuatro embriones rompieron el ligamiento

13
Embriones creados y analizados
PGT-A y PGT-M para las dos variantes maternas
9 69 %
Con las dos variantes o con ninguna
Lo esperable si viajan juntas, como indica el cis
4 31 %
Con una sola de las dos variantes
Recombinación meiótica entre OTC y STS
31 cM
Distancia entre OTC y STS (unos 31 Mb)
Predice un 31 % de recombinación

Lo esperado por la distancia y lo observado en los embriones

La frecuencia observada coincide con la que predice la separación entre los dos genes.

Recombinación esperada según la distancia (31 cM)
31 %~31 Mb
Recombinación observada en los embriones
31 %4 de 13
La coincidencia sostiene la recombinación frente a un error de genotipado repetido

Los trece embriones, uno a uno

Resultado de PGT-M para la deleción materna de Xp22.31 (STS) y para la variante materna de OTC, más el resultado de PGT-A. Tabla 1 del artículo.

Ninguna variante detectada Las dos detectadas Solo una: recombinación
#1 F
STS
Portadora
OTC
Portadora
Euploide
#2 M
STS
Bajo riesgo
OTC
Bajo riesgo
Mosaico alto: trisomía 21
#3 F
STS
Bajo riesgo
OTC
Bajo riesgo
Euploide · transferido
#4 M
STS
Bajo riesgo
OTC
Bajo riesgo
Euploide
#5 M
STS
Bajo riesgo
OTC
En riesgo
Euploide
#6 F
STS
Bajo riesgo
OTC
Portadora
Mosaico bajo: monosomía 7
#7 M
STS
Bajo riesgo
OTC
Bajo riesgo
Euploide
#8 F
STS
Portadora
OTC
Portadora
Euploide
#9 F
STS
Bajo riesgo
OTC
Bajo riesgo
Euploide
#10 F
STS
Portadora
OTC
Portadora
Aneuploide: trisomía 4
#11 F
STS
Bajo riesgo
OTC
Portadora
Mosaico bajo: trisomía 9
#12 M
STS
Bajo riesgo
OTC
En riesgo
Aneuploide: monosomía parcial 1q21.2q44 (99 Mb)
#13 F
STS
Bajo riesgo
OTC
Bajo riesgo
Euploide

«Bajo riesgo» indica que el embrión no es ni portadora heterocigota ni varón hemicigoto. «Portadora» indica mujer heterocigota prevista. «En riesgo» indica varón hemicigoto para la variante evaluada y previsiblemente afectado.

El método

De la muerte del primer hijo al embrión transferido

1

El diagnóstico llegó después

El embarazo del hijo cursó con cribado de portadores negativo para OTC y estriol bajo en el cribado sérico materno. Un FISH materno identificó la deleción Xp22.3 de STS, que explicaba el estriol. Se ofreció amniocentesis y se rechazó.

El niño nació a las 37 semanas por cesárea iterativa, con lesiones cutáneas compatibles con ictiosis ligada al X. A las 45 horas de vida hizo distrés respiratorio y parada cardiaca. El estudio bioquímico mostró amonio por encima de 900 µmol/L (referencia 55-107), ácido orótico urinario muy elevado y citrulina plasmática descendida, 5 µmol/L (referencia 1-45). La secuenciación de genoma identificó la variante materna OTC c.788A>G (p.Asp263Gly). La resonancia mostró daño neurológico extenso. Falleció a los tres días de vida.

Corrección de AdrIA: el pre-proof imprime estos dos valores en «mM». A esas concentraciones la unidad correcta es µmol/L, que es la que figura arriba. Es el único punto de toda la ficha en el que no se reproduce el original literalmente.
2

Confirmar las dos variantes y su fase

Al revisar el cribado de portadores negativo se confirmó la variante familiar de OTC: el laboratorio la había clasificado como VUS según las guías ACMG vigentes entonces y, por eso, no la informó.

Un microarray cromosómico caracterizó la deleción materna como la recurrente de 1,6 Mb en Xp22.31, que abarca por completo cuatro genes codificantes (STS, PUDP, PNPLA4 y VCX), de los cuales solo STS se asocia a una enfermedad conocida. El laboratorio de secuenciación no había informado la deleción en el hijo; se reanalizó usando el ADN materno como control positivo. Quedaron confirmadas ambas variantes en el niño en hemicigosis y en cis en el haplotipo materno.

3

FIV con PGT-M sobre trece embriones

Se amplificó el genoma completo de cada muestra embrionaria con el kit Ion SingleSeq (Thermo Fisher Scientific).

Para la variante de OTC se hizo análisis directo e indirecto por PCR fluorescente: genotipado de la variante patogénica y análisis de marcadores polimórficos ligados, leídos por análisis de fragmentos en un secuenciador automático. Para la deleción de Xp22.31 solo fue posible el análisis indirecto, por amplificación de marcadores polimórficos ligados. Los trece embriones se estudiaron además con PGT-A.

4

La cuenta de la distancia

OTC está en Xp11.4 (X:38.327.684-38.422.928, GRCh38) y STS en Xp22.31 (X:7.147.290-7.354.641). Los separan unos 31 millones de pares de bases, aproximadamente 31 centimorgan, lo que predice un 31 % de recombinación entre ambos.

La frecuencia observada fue de 4 embriones sobre 13, un 31 %. Esa correspondencia es lo que sostiene la recombinación meiótica como explicación frente a un resultado de PGT-M repetidamente inexacto por error de genotipado.

Se transfirió el embrión #3, femenino, euploide y de bajo riesgo por PGT-M para las dos variantes maternas. La paciente rechazó la confirmación prenatal por biopsia corial o amniocentesis. Nació una niña sana a las 39 semanas por cesárea iterativa, con cribado neonatal negativo, que sigue creciendo y desarrollándose sin incidencias.

La letra pequeña

Lo que los autores reconocen que este caso no puede demostrar

Las cuatro limitaciones de abajo son las que señalan los propios autores en la discusión, no lecturas añadidas.

Tamaño muestral: trece embriones

Los autores señalan el tamaño muestral reducido (n=13) como limitación, porque acota la estimación de la frecuencia de recombinación.

No hubo confirmación prenatal

Se ofreció biopsia corial y amniocentesis para confirmar el resultado del PGT-M y la paciente las rechazó, lo que restringe la validación del desenlace tras la transferencia. Hasta la fecha no se ha realizado ninguna prueba confirmatoria.

La deleción no admitía detección directa

La deleción de 1,6 Mb de STS resultó incompatible con los métodos de detección directa, así que se analizó por ligamiento con marcadores polimórficos. Los autores apuntan al valor de técnicas de mayor resolución, como arrays de SNP o NGS basado en los puntos de rotura de la CNV.

El cribado de portadores no vio ninguna de las dos

Ni la variante de OTC ni la deleción de STS aparecieron en el cribado preconcepcional: la primera se clasificó como VUS y la segunda no estaba en el panel inicial. Los autores plantean que los laboratorios valoren informar VUS en condiciones ligadas al X en mujeres.

«La recombinación meiótica puede dar resultados inesperados cuando se usa PGT-M para cribar embriones frente a varias enfermedades monogénicas con variantes situadas en el mismo cromosoma. Detectar variantes ligadas, en lugar de genotipar directamente, puede llevar a un resultado falso negativo.»

Iversen, Gerber et al., F&S Reports 2026 · Conclusión del artículo

Qué proponen los autores

Lo que este caso les lleva a recomendar

Recogido de la discusión del artículo. Son sus recomendaciones, no conclusiones nuestras.

1

Analizar cada variante en todos los embriones

Cuando existe sospecha de varias variantes causantes en el mismo cromosoma, debe analizarse cada variante en todos los embriones, y la interpretación del riesgo debe hacerse a partir del resultado de todas ellas, no de una sola.

2

Detección directa siempre que se pueda

El análisis por ligamiento por sí solo puede no detectar la recombinación y clasificar mal embriones afectados. Cuando es posible, la detección directa de la variante reduce ese riesgo. Para las CNV, los autores apuntan a arrays de SNP o a NGS basado en los puntos de rotura, capaces de detectar directamente deleciones pequeñas.

3

Ofrecer diagnóstico prenatal de confirmación

ASRM ya ha reconocido que la recombinación meiótica puede suponer una limitación técnica del PGT-M, y por eso recomienda ofrecer diagnóstico prenatal de confirmación en las gestaciones tras transferencia de embriones estudiados con PGT-M. Se suma otra razón: no se dispone de valores predictivos positivo y negativo para las sondas individualizadas de PGT-M.

4

Contarlo en el consejo genético

Los autores señalan que asesores genéticos y genetistas deberían informar a las familias de la posibilidad de eventos de recombinación capaces de alterar los patrones de herencia esperados, para garantizar un consentimiento informado en la decisión reproductiva.

Las palabras

Glosario, con la definición que da el artículo

Ninguna definición es nuestra. Todas están en el texto original.

Recombinación meiótica (crossing over)

El proceso por el que los cromosomas homólogos intercambian material genético y crean combinaciones nuevas de alelos en la descendencia.

En cis

Dos variantes situadas en el mismo cromosoma y en el mismo haplotipo parental.

Hemicigoto

Presencia de una variante en el único cromosoma X que tiene un individuo XY.

PGT-M

Biopsia del trofoectodermo de cada embrión para obtener ADN y analizar la variante familiar causante de enfermedad, y transferir después de forma selectiva los embriones aparentemente no afectados.

Análisis por ligamiento

Evaluación de marcadores de ADN situados muy cerca de la variante causante, presumiendo que ambos se coheredarán. Se considera el patrón de referencia del PGT-M porque sortea el allele dropout, la amplificación preferente y el fallo de amplificación de uno de los dos alelos.

Centimorgan (cM)

Distancia genómica que corresponde a una probabilidad aproximada del 1 % de recombinación meiótica, equivalente de forma aproximada a un millón de pares de bases.

Falso negativo en PGT-M

Un embrión que hereda la variante patogénica pero no el patrón de marcadores esperado, y que se clasifica por error como no afectado.

VUS

Variante de significado incierto. Las guías ACMG recomiendan que el cribado de portadores informe variantes patogénicas y probablemente patogénicas; informar VUS solo se considera apropiado en la pareja reproductiva de un portador identificado.

Para citarlo

El artículo original

Iversen A, Gerber SK, Chamanara S, Verma K, Adelson S, Yang C, Tise CG. Meiotic Recombination Observed through Preimplantation Genetic Testing for Two X-linked Conditions: First Reported Case in Humans. F&S Reports. 2026. (Journal Pre-proof; recibido 13 abr 2026, aceptado 3 ago 2026.)
doi.org/10.1016/j.xfre.2026.08.001
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